سبد خرید

مجموع : 0 تومان
راهنمای ارسال نمونه

 

در حال حاضر معتبر­ترین شرکت سازنده دستگاه­های sequencer، Applied Biosystems (ABI) می­باشد و گروه زیست فن آوری پیشگام خدمات تعیین توالی به روش سنگر را به وسیله دستگاه  Applied Biosystems 3500 با بالا­ترین کیفیت همراه با مشاوره علمی به پژوهشگران ارائه می­دهد.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

شکل 1: دستگاه  Applied Biosystems 3500

 

در این مرکز، امکان خوانش قطعات تا طول 800 جفت باز و خوانش دو طرفه Forward & Reverse برای قطعات طویل و استفاده رایگان از پرایمر­های Universal موجود در آزمایشگاه که در لیست زیر ارائه شده، فراهم می­باشد. علاوه بر خدمات فوق، امکان خوانش توالی­های غنی از GC به کمک پروتوکل­های اختصاصی وجود دارد. در صورتی که نتیجه تعیین توالی در مرحله اول مناسب نباشد، پس از آنالیز جواب­ها و بررسی کیفیت نمونه­ها در صورت مناسب بودن یکبار به صورت رایگان خوانش قابل تکرار است. {شرکت زیست فن آوری پیشگام از پژوهشگران محترم خواهشمند است حتما در استاندارد بودن شرایط نمونه­های ارسالی (که در ذیل توضیح داده شده) حداکثر دقت را بفرمایند، لازم به ذکر است درصورت عدم رعایت نکات مذکور و به تبع نا­مناسب بودن جواب­ها پس از تکرار رایگان، شرکت مسئولیتی در قبال جواب­های دریافتی نمی­پذیرد). همچنین پرایمر­ها و نمونه­های ارسالی توسط مشتریان پس از انجام توالی یابی به مدت یک ماه در بانک مربوط نگه داری می­شوند.

 

هزینه خدمات

* برای اطلاع از هزینه خدمات با شرکت تماس حاصل فرمایید.

شرایط لازم برای نمونه­ها و پرایمر­های ارسالی جهت درخواست تعیین توالی

  1. جدول زیر حداقل مقدار لازم و غلظت مورد نیاز را نشان می­دهد. در صورت امکان، ارسال مقدار بیشتری از نمونه توصیه می­گردد تا در صورت نیاز به تکرار خوانش و یا خوانش با پرایمر­های متعدد نیاز به ارسال مجدد نباشد.

 

Remarks

Sample Requirement

Template

Type/Format

For re-sequencing, at least 5 µl is required

* 100 ng/µl

* Minimum volume: 20 µl

Plasmid

N/A

* Agar plate/ Glycerol Stock

* gDNA: 30-50 ng

* Minimum volume: 20 µl

16S

For re-sequencing, at least 5 µl is required

* 50 ng/µl

* Minimum volume: 20 µl

PCR Product (Purified)

N/A

*> 100 ng/µl

* Minimum volume: 20 µl

PCR Product (Unpurified)

N/A

* 100 ng/µl

* Minimum volume: 20 µl

Difficult Sequence

Single Strand Sequencing: 1µg/ 1kb insert.

If insert size is longer than 4kb, clone is req

8 µg (for an insert size of up to 4kb)

Primer Walking

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

  1. لطفا نمونه­های DNA در آب دیونیزه حل شود نه در سایر بافر­ها.
  2. حتما قبل از ارسال نمونه، مقدار کمی از آن را روی ژل برده و با مقایسه با نشانگر (Ladder) از اختصاصیت محصول مورد نظر مطمئن شوید (شکل 2). برای هر نمونه حداقل 25-20 میکرولیتر مورد نیاز می­باشد.

 

شکل 2: تصویری از باند­های اختصاصی محصولات برای تعیین توالی

  1. توصیه می­گردد همراه نمونه تصویر ژل نیز ارسال گردد (ارسال تصویر الکترونیک از طریق ایمیل شرکت نیز قابل قبول است). همکاران ما در شرکت تصاویر ژل­ها را بررسی نموده و وجود هر گونه مشکل در ارتباط با کیفیت و اختصاصیت محصول تکثیر شده را به مشتریان محترم اعلام می­کنند.
  2. به طور معمول در صورت عدم تخلیص نمونه­ها، نتایج تعیین توالی مناسب نخواهد بود، از این رو تمامی نمونه­های دریافتی توسط شرکت به روش ستونی یا با اضافه کردن آنزیم اگزو سپ تخلیص می­گردند.

* منظور از تخلیص محصول PCR، حذف پرایمر­ها و نوکلئوتید­های اضافی و مصرف نشده باقیمانده در هر واکنش است که وجود آن­ها می­تواند باعث مشکلاتی در خوانش­های حاصل از دستگاه گردد.

  1. در مورد نمونه­هایی که دارای قطعات اضافی هستند (باند اضافی روی ژل)، می­بایستی باند اختصاصی از ژل استخراج شده و سپس تعیین توالی گردد.

*لازم به ذکر است که تخلیص، مشکل نمونه­هایی که حاوی بیش از یک قطعه باشند (به عبارتی قطعات غیر­اختصاصی در طول تکثیر ایجاد کرده باشند) را برطرف نمی­کند و در مورد این موارد می­بایستی حتما ابتدا استخراج از ژل صورت گیرد.

  1. نیازی به ارسال پرایمر­های universal ذکر شده در جدول زیر نمی­باشد. در صورت نیاز به خوانش با هر کدام از این پرایمر­ها نام کامل پرایمر را در ستون مربوطه ذکر نمایید. ضمنا برای جلوگیری از هر گونه اشتباه، لطفا توالی پرایمر مورد نظر را نیز ایمیل کنید.
  2. در مورد پرایمر­های ارسالی رعایت موارد ذیل در دستیابی به نتیجه مناسب دارای اهمیت است:
  • ترجیحا پرایمر­ها در آب دیونیزه حل شوند.
  • استوک پرایمر­های ارسالی جدید بوده و دارای خلوص بالایی باشد.
  • در مورد طراحی پرایمر­های مورد استفاده برای توالی یابی، عدم اتصال غیر­اختصاصی و عدم وجود ساختار­های ثانویه از اهمیت بسزایی برخوردار است.
  • بهتر است طول پرایمر­ها 2518 نوکلئوتید، با میزان GC برابر 6040 درصد و Tm برابر 6055 درجه سانتی گراد باشد.
  1. توصیه می­گردد غلظت پرایمر­های ارسالی 10 پیکومول در میکرولیتر باشد. حجم پرایمر مورد نیاز، 15 میکرولیتر برای نمونه اول و 10 میکرولیتر برای هر نمونه اضافی می­باشد.
  2.  لطفا نام نمونه­ها و پرایمر­ها را به زبان انگلیسی و خوانا و به صورت مختصر بر روی ویال­ها بنویسید و دقت فرمایید که تفاوتی در نام روی ویال­ها با اطلاعات ذکر شده در فرم ارسالی نباشد.
  3. نمونه­ها و پرایمر­ها را در ویال­های یک و نیم میلی لیتری قرار داده و حتما در آن­ها را با پارافیم ببندید.
  4. فرم درخواست با فرمت Excel تهیه شده و در وب سایت شرکت موجود می­باشد. ضمنا در صورت درخواست، به ایمیل شما نیز ارسال خواهد شد. پس از پر کردن فرم­ مذکور، خواهشمند است ضمن ارسال فرم به ایمیل شرکت، فرم را پرینت نموده و همراه نمونه­ها، پرایمر­ها و تصویر ژل به شرکت ارسال نمایید.
  5. تحویل نتایج به صورت ارسال به پست الکترونیک سفارش دهنده می­باشد.
  6. در صورتی که نتیجه تعیین توالی در مرحله اول مناسب نباشد، پس از آنالیز جوابها وبررسی کیفیت نمونه ها در صورت مناسب بودن یکبار به صورت رایگان خوانش قابل تکرار است.

 

* در صورت نیاز به اطلاعات بیشتر با شرکت تماس حاصل فرمایید.

فهرست پرایمر­های universal موجود در آزمایشگاه

Universal Primers

No

Primer Name

Sequence (5'→ 3')

Base

1

Bluescript SK

CGCTCTAGAACTAGTGGATC

20

2

EBV-RP

GTGGTTTGTCCAAACTCATC

20

3

KAN2-FP

ACCTACAACAAAGCTCTCATCAACC

25

4

KAN2-RP

GCAATGTAACATCAGAGATTTTGAG

25

5

M13-FP

TGTAAAACGACGGCCAGT

18

6

pBacPAC-RP

GTCTGTAAATCAACAACGC

19

7

pBAD-FP

ATGCCATAGCATTTTTATCC

20

8

pDONOR-FP

TAACGCTAGCATGGATCTC

19

9

pEGFP_N

CCGTCCAGCTCGACCAG

17

10

pEGFP-FP

TTTAGTGAACCGTCAGATC

19

11

pEGFP-RP

AACAGCTCCTCGCCCTTG

18

12

pESP-RP

TCCAAAAGAAGTCGAGTGG

19

13

pET-24a

GGGTTATGCTAGTTATTGCTCAG

23

14

pET-RP

CTAGTTATTGCTCAGCGG

18

15

pMalE

TCAGACTGTCGATGAAGC

18

16

pREP-fwd

GCTCGATACAATAAACGCC

19

17

35S-A

AAGGGTCTTGCGAAGGATAG

20

18

35S-B

AGTGGAAAAGGAAGGTGGCT

20

19

AD Reverse

AGATGGTGCACGATGCACAG

20

20

CYC1 Reverse

GCGTGAATGTAAGCGTGAC

19

21

DsRed1-C

AGCTGGACATCACCTCCCACAACG

24

22

DsRed1-N

GTACTGGAACTGGGGGGACAG

21

23

EGFP-C

CATGGTCCTGCTGGAGTTCGTG

22

24

EGFP-N

CGTCGCCGTCCAGCTCGACCAG

22

25

GAL1 Forward

AATATACCTCTATACTTTAACGTC

24

26

U-19mer Primer

GTTTTCCCAGTCACGACGT

19

27

T7 EEV

ATGTCGTAATAACCCCGCCCCG

22

28

Bluescript KS

TCGAGGTCGACGGTATC

17

29

pFastBac Forward

GGATTATTCATACCGTCCCA

20

30

pFastBac Reverse

CAAATGTGGTATGGCTGATT

20

31

AOX1 Forward

GACTGGTTCCAATTGACAAGC

21

32

AOX1 Reverse

GCAAATGGCATTCTGACATCC

21

33

a-Factor

TACTATTGCCAGCATTGCTGC

21

34

STag 18mer Primer

GAACGCCAGCACATGGAC

18

35

MT Forward

CATCTCAGTGCAACTAAA

18

36

QE Promoter

CCGAAAAGTGCCACCTG

17

37

pRH Forward

CTGTCTCTATACTCCCCTATAG

22

38

pRH Reverse

CAAAATTCAATAGTTACTATCGC

23

39

SV40-pArev

CCTCTACAAATGTGGTATGG

20

40

SV40-Promoter

GCCCCTAACTCCGCCCATCC

20

41

pTrcHis Forward

GAGGTATATATTAATGTATCG

21

42

ITS1

TCCGTAGGTGAACCTGCGG

19

43

ITS2

GCTGCGTTCTTCATCGATGC

20

44

ITS3

GCATCGATGAAGAACGCAGC

20

45

ITS4

TCCTCCGCTTATTGATATGC

20

46

ITS5

GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG

22

47

pJET1.2F

CGACTCACTATAGGGAGAGCGGC

23

48

pJET1.2R

AAGAACATCGATTTTCCATGGCAG

24

49

T7

AATACGACTCACTATAG

17

50

T7terminator

GCTAGTTATTGCTCAGCGG

19

51

T7promoter

TAATACGACTCACTATAGGG

20

52

T3

ATTAACCCTCACTAAAG

17

53

SP6

ATTTAGGTGACACTATAG

18

54

M13F-pUC(-40)

GTTTTCCCAGTCACGAC

17

55

M13R-pUC(-40)

CAGGAAACAGCTATGAC

17

56

M13F

GTAAAACGACGGCCAGT

17

57

M13R

GCGGATAACAATTTCACACAGG

22

58

pGEX5

GGCAAGCCACGTTTGGTG

18

59

pGEX3

GGAGCTGCATGTGTCAGAGG

20

60

27F

AGAGTTTGATCMTGGCTCAG

20

61

1492R

TACGGYTACCTTGTTACGACTT

22

62

518F

CCAGCAGCCGCGGTAATACG

20

63

800R

TACCAGGGTATCTAATCC

18

64

BGH-R

TAGAAGGCACAGTCGAGG

18

65

CMV-F

CGCAAATGGGCGGTAGGCGTG

21

66

RVprimer3

CTAGCAAAATAGGCTGTCCC

20

67

RVprimer4

GACGATAGTCATGCCCCGCG

20

68

GLprimer1

TGTATCTTATGGTACTGTAACTG

23

69

GLprimer2

CTTTATGTTTTTGGCGTCTTCCA

23

70

pQE-F

CCCGAAAAGTGCCACCTG

18

71

pQE-R

GTTCTGAGGTCATTACTGG

19

72

Gal4AD

TACCACTACAATGGATG

17

73

pBAD-F

ATGCCATAGCATTTTTATCCA

21

74

pBAD-R

GATTTAATCTGTATCAGG

18

75

EGFP-CF

AGCACCCAGTCCGCCCTGAGC

21

76

EGFP-CR

CGTCCATGCCGAGAGTG

17

77

EGFP-NR

CGTCGCCGTCCAGCTC

16

78

LCO1490

GGTCAACAAATCATAAAGATATTGG

25

79

HCO2198

TAAACTTCAGGGTGACCAAAAAATCA

26

80

785F

GGATTAGATACCCTGGTA

18

81

907R

CCGTCAATTCMTTTRAGTTT

20

82

337F

GACTCCTACGGGAGGCWGCAG

21

83

1100R

GGGTTGCGCTCGTTG

15

84

NS1

GTAGTCATATGCTTGTCTC

19

85

NS8

TCCGCAGGTTCACCTACGGA

20

86

LR0R

ACCCGCTGAACTTAAGC

17

87

LR7

TACTACCACCAAGATCT

17